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Quel est le nom de ce bogue ?

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Un de mes amis a trouvé ce bug en Allemagne. Il a envoyé la photo et a demandé si quelqu'un savait de quel type de bogue il s'agissait. Comme personne ne le savait et que je n'ai rien trouvé de similaire via la recherche google, j'ai décidé de le demander ici. Puisqu'il ne m'a envoyé que l'image, je ne peux pas vraiment donner de bonnes informations concernant la taille. Quelqu'un peut-il donc identifier de quel type de bug il s'agit ?


On dirait que c'est l'inverse pour moi. Plus probablement un membre d'Auchenorrhyncha, qui comprend les cigales et les cicadelles. Je dis cela à en juger par la structure des jambes, la forme de l'abdomen et les yeux. Il manque cependant des ailes… peut-être ont-elles été enlevées par un autre organisme ?

Il ressemble un peu à Philaenus spumarius, le "saute grenouille des prés" que l'on trouve en Allemagne. Quant à la queue verte, je n'en suis pas si sûr.


Les noms communs des Coreidae varient selon les régions. La punaise à pieds foliaires fait référence à des expansions en forme de feuille sur les pattes de certaines espèces, généralement sur les tibias postérieurs. En Amérique du Nord, le statut phytosanitaire d'espèces telles que Anasa tristis sur les plantes de courge et autres cucurbitacées a donné naissance au nom de punaises de la courge. [3] [4] Les Coreidae sont appelés twig-wilters ou tip-wilters dans certaines parties de l'Afrique et de l'Australie parce que de nombreuses espèces se nourrissent de jeunes brindilles, injectant des enzymes qui font macérer les tissus des pointes en croissance et les font flétrir brusquement. [5] [6]

Les Coreidae sont généralement de forme ovale, avec des antennes composées de quatre segments, de nombreuses veines dans la membrane des ailes antérieures et des glandes puantes répugnantes visibles de l'extérieur. Leur taille varie de 7 à 45 mm de long, ce qui implique que la famille comprend certaines des plus grandes espèces d'Hétéroptères. La forme du corps est assez variable, certaines espèces sont largement ovales, d'autres sont allongées avec des côtés parallèles et quelques-unes sont minces. De nombreuses espèces avec les tibias "à pieds feuilletés" sont très minces avec des expansions visibles des tibias postérieurs, mais certaines espèces robustes ont également des expansions décidées. Certaines espèces sont couvertes d'épines et de tubercules. [7] À titre d'exemple, la tribu Phyllomorphini Mulsant & Rey, 1870, est remarquablement aberrante, avec des pattes minces, des poils épineux et des contours et des ornements laciniés.

La plupart des espèces les plus robustes ont des fémurs postérieurs grossièrement agrandis, épaissis et courbés, armés de pointes sur le bord interne et de tibias postérieurs assortis, bien que l'élargissement des tibias soit moins exagéré. [1] [3]

Chez les nymphes, les ouvertures des deux glandes puantes répugnantes des Coreidae sont visibles sous la forme de deux projections ou taches sur la ligne médiale de la face dorsale de l'abdomen, une à l'avant et une au bord postérieur du cinquième tergite abdominal au-dessus. les glandes à l'intérieur. Au cours de l'ecdysis finale, l'anatomie est réarrangée et les glandes se retrouvent dans le métathorax, s'ouvrant latéralement par des ostioles entre la plèvre mésothoracique et métathoracique. [8]

Les Coreidae se nourrissent généralement de la sève des plantes. Certaines espèces seraient activement carnivores, [9] mais les preuves matérielles manquent, et sur le terrain, certaines sont faciles à confondre avec certaines espèces des Reduviidae, donc un doute a été jeté sur la véracité des affirmations. [dix]

Certains Coreidae, comme Phyllomorpha laciniata, font preuve de soins parentaux en portant leurs œufs. Ce comportement améliore considérablement les chances des œufs d'éviter les attaques de parasitoïdes. [11]

Les Coreidae sont classés dans l'ordre des Hémiptères et étroitement liés aux familles Alydidae, Hyocephalidae, Rhopalidae et Stenocephalidae. Ensemble, ces cinq familles forment la superfamille Coreoidea. La famille est grande, avec plus de 1 900 espèces dans plus de 270 genres. [7]

La plupart des taxonomistes traitant des Coreidae divisent la famille en trois ou parfois quatre sous-familles. De nombreuses tribus des Coreinae ont déjà été proposées pour l'élévation au rang de sous-famille, par exemple, les Agriopocorini, Colpurini, Hydarini, Phyllomorphini et Procamptini, mais le seul de ces changements qu'au moins une minorité significative de chercheurs accepte actuellement est l'élévation des Agriopocorinae, et des revues récentes ont tendance à les traiter à nouveau comme une tribu, ne reconnaissant que les trois sous-familles connues en 1867. Une autre difficulté est que le genre Eubule n'a pas encore été placé.

Il a été démontré que la famille n'était pas monophylétique, car les Hydarinae et les Pseudophloeinae sont plus étroitement apparentés aux Alydidae qu'aux autres coréides. [12]

En conséquence, les sous-familles sont les suivantes, ainsi que les genres illustratifs de chacune :

  • AcanthocéphaleLaporte, 1833
  • AcanthocerusPalisot, 1818
  • AlthosKirkaldy, 1904
  • AmblyomieStål, 1870
  • AmblypeltaStål, 1873
  • AnasaAmyot & Serville, 1843
  • CanungrantmictisBrailovsky, 2002
  • CatorhinthaStål, 1859
  • CharisterusLaporte, 1833
  • ChelinideaUhler, 1863
  • ChondrocèresLaporte, 1832
  • CimolusStål, 1862
  • CoreusLixiviation, 1815
  • DaladerAmyot & Serville, 1843
  • DallacorisOsuna, 1981
  • ÉlasmopodesStål, 1873
  • EuthochthaMayr, 1865
  • FicanaStål, 1862
  • HelcomeriaStål, 1873
  • HolhyménieLepeletier & Serville, 1825
  • HypselonotusHahn, 1833
  • LeptoglosseGuérin-Ménéville, 1831 – les punaises des graines de conifères
  • MaduraStål, 1860
  • MamuriusStål, 1862
  • MénénoteLaporte, 1832
  • MozenaAmyot & Serville, 1843
  • NamacusAmyot & Serville, 1843
  • NarniaStål, 1862
  • NisoscolopocerusBarbier, 1928
  • PéphricusAmyot & Serville, 1843
  • PhthieStål, 1862
  • PhyllomorpheLaporte 1833
  • PlectropodesBergroth, 1894
  • PiezogasterAmyot & Serville, 1843
  • SagotyleMayr, 1865
  • SaviusStål, 1862
  • ScolopocerusUhler, 1875
  • SéphineAmyot & Serville, 1843
  • SetheniraSpinola, 1837
  • SpartocèreLaporte, 1833
  • ThasusStål, 1865
  • ZiccaAmyot & Serville, 1843

Agriopocorinae Miller, 1953 (souvent inclus dans Coreinae)


Quel est le nom de ce bogue ? - La biologie

La cochenille de la papaye, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink, est un petit hémiptère qui attaque plusieurs genres de plantes hôtes, y compris les fruits tropicaux et les plantes ornementales d'importance économique. La cochenille de la papaye a été découverte dans les comtés de Manatee et Palm Beach en Floride en 1998 et s'est ensuite rapidement propagée à plusieurs autres comtés de Floride. Il représente potentiellement une menace de plusieurs millions de dollars pour de nombreux produits agricoles en Floride, ainsi que dans d'autres États, s'il n'est pas contrôlé. Le contrôle biologique a été identifié comme un élément clé dans une stratégie de gestion de la cochenille du papayer, et un programme de contrôle biologique classique a été lancé dans le cadre d'un effort conjoint entre le département américain de l'Agriculture, le département de l'Agriculture de Porto Rico et le ministère de l'Agriculture de la République dominicaine. en 1999.

Figure 1. Adultes et sacs d'œufs de cochenille du papayer, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Photographie de Dale Meyerdirk, Institut national de contrôle biologique.

Distribution (Retour en haut)

La cochenille de la papaye serait originaire du Mexique et/ou d'Amérique centrale. Il n'y a jamais acquis le statut de ravageur sérieux, probablement en raison de la présence d'un complexe d'ennemis naturels endémiques. Les premiers spécimens ont été collectés au Mexique en 1955. La cochenille du papayer a été décrite en 1992 dans la région néotropicale du Belize, du Costa Rica, du Guatemala et du Mexique (Williams et Granara de Willink 1992). Lorsque la cochenille du papayer a envahi la région des Caraïbes, elle y est devenue un ravageur depuis 1994, elle a été signalée dans les 14 pays des Caraïbes suivants : Saint-Martin, Guadeloupe, Saint-Barthélemy, Antigua, Bahamas, Îles Vierges britanniques, Cuba, République dominicaine, Haïti, Porto Rico, Montserrat, Nevis, Saint-Kitts et les îles Vierges américaines. Plus récemment, des spécimens sont apparus dans les régions du Pacifique de Guam et de la République des Palaos.

La cochenille du papayer a été découverte à Bradenton, en Floride, en 1998 sur de l'hibiscus. En janvier 2002, il avait été collecté 80 fois sur 18 espèces végétales différentes dans 30 villes des comtés d'Alachua, Brevard, Broward, Collier, Dade, Hillsborough, Manatee, Martin, Monroe, Palm Beach, Pinellas, Polk, Sarasota et Volusia.

Des spécimens ont également été interceptés au Texas et en Californie, et on s'attend à ce que la cochenille de la papaye s'établisse rapidement dans toute la Floride et à travers les États du Golfe jusqu'en Californie. Il est possible que certaines cultures de serre soient menacées dans des régions aussi éloignées au nord que le Delaware, le New Jersey et le Maryland. Il a déjà été identifié sur des plants de papayer au Garfield Conservatory à Chicago, Illinois fin août 2001. Un programme de lutte biologique a été mis en place en décembre 2001 avec des résultats très positifs.

Figure 2. Répartition de la cochenille du papayer, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink, mai 2003. Dessin de Dale Meyerdirk, National Biological Control Institute.

Description (Retour en haut)

Les infestations de cochenilles du papayer sont généralement observées sous forme de grappes de masses semblables à du coton sur la partie aérienne des plantes. La femelle adulte est jaune et est recouverte d'un enduit cireux blanc. Les femelles adultes mesurent environ 2,2 mm de long (1/16 de pouce) et 1,4 mm de large. Une série de courts filaments caudaux cireux de moins d'un quart de la longueur du corps existe autour de la marge.

Figure 3. Infestation des feuilles de papayer par la cochenille du papayer, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Photographie de Dale Meyerdirk, Institut national de contrôle biologique.

Figure 4. Cochenille du papayer femelle adulte, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Dessin de D. Miller et G. Miller, USDA.

Les œufs sont jaune verdâtre et sont pondus dans un sac à œufs qui fait trois à quatre fois la longueur du corps et entièrement recouvert de cire blanche. L'ovisac est développé ventralement sur la femelle adulte.

Les mâles adultes ont tendance à être de couleur rose, en particulier pendant les stades pré-nymphaux et nymphal, mais apparaissent jaunes aux premier et deuxième stades larvaires. Les mâles adultes mesurent environ 1,0 mm de long, avec un corps ovale allongé qui est le plus large au niveau du thorax (0,3 mm). Les mâles adultes ont des antennes à dix segments, un édéage distinct, des grappes de pores latéraux, un thorax et une tête fortement sclérotisés et des ailes bien développées.

Figure 5. Cochenille du papayer mâle adulte, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Dessin de D. Miller et G. Miller, USDA.

Miller et Miller (2002) donnent une description complète de tous les stades des deux sexes de la cochenille du papayer, ainsi qu'une description complète des caractères utilisés pour distinguer la cochenille du papayer des autres espèces étroitement apparentées. Deux caractéristiques importantes pour distinguer P. marginatus femelles adultes de toutes les autres espèces de Paracoque sont : la présence de canaux tubulaires buccaux limités dorsalement aux zones marginales du corps et l'absence de pores sur les tibias postérieurs. Les mâles adultes se distinguent des autres espèces apparentées par la présence de grosses soies charnues sur les antennes et l'absence de soies charnues sur les pattes.

La cochenille du papayer se distingue facilement des Maconellicoccus marginatus (Vert), la cochenille rose de l'hibiscus, car les femelles de la cochenille du papayer ont huit segments antennaires, contre neuf chez cette dernière espèce.

Figure 6. Diverses mises en scène dans le cycle de vie des cochenilles roses de l'hibiscus, Maconellicoccus hirsutus (Vert). Photographie de Dale Meyerdirk, Institut national de contrôle biologique.

Les spécimens de cochenille du papayer deviennent noir bleuâtre lorsqu'ils sont placés dans de l'alcool, comme cela est caractéristique des autres membres de ce genre.

Biologie (Retour en haut)

Les détails sur la biologie et le cycle de vie de la cochenille du papayer manquent. En général, les cochenilles ont des pièces buccales piqueuses-suceuses et se nourrissent en insérant leurs pièces buccales dans les tissus végétaux et en aspirant la sève. Les cochenilles sont plus actives par temps chaud et sec. Les femelles n'ont pas d'ailes et se déplacent en rampant sur de courtes distances ou en étant emportées par les courants d'air. Les femelles pondent généralement de 100 à 600 œufs dans un ovisac, bien que certaines espèces de cochenilles donnent naissance à des petits vivants. La ponte a généralement lieu sur une période d'une à deux semaines. L'éclosion des œufs se produit dans environ 10 jours, et les nymphes, ou chenilles, commencent à rechercher activement des sites d'alimentation. Les chenilles femelles ont quatre stades larvaires, une génération prenant environ un mois, selon la température. Les mâles ont cinq stades, dont le quatrième est produit dans un cocon et appelé pupe. Le cinquième stade du mâle est la seule forme ailée de l'espèce capable de voler. Les femelles adultes attirent les mâles avec des phéromones sexuelles. Dans des conditions de serre, la reproduction a lieu tout au long de l'année et, chez certaines espèces, peut se produire sans fertilisation.

Plantes hôtes (Retour en haut)

La cochenille du papayer est polyphage et a été signalée sur des plantes hôtes >55 dans plus de 25 genres. Les plantes hôtes économiquement importantes de la cochenille de la papaye comprennent la papaye, l'hibiscus, l'avocat, les agrumes, le coton, la tomate, l'aubergine, les poivrons, les haricots et les pois, la patate douce, la mangue, la cerise et la grenade.

Dommages (Retour en haut)

La cochenille du papayer se nourrit de la sève des plantes en insérant ses stylets dans l'épiderme de la feuille, ainsi que dans le fruit et la tige. Ce faisant, il injecte une substance toxique dans les feuilles. Le résultat est la chlorose, le rabougrissement des plantes, la déformation des feuilles, la chute précoce des feuilles et des fruits, une forte accumulation de miellat et la mort. De fortes infestations peuvent rendre les fruits non comestibles en raison de l'accumulation de cire blanche épaisse. La cochenille du papayer n'a été signalée qu'en se nourrissant de zones de la plante hôte situées au-dessus du sol, à savoir les feuilles et les fruits.

Figure 7. Infestation du fruit de la papaye et dégâts causés par la cochenille de la papaye, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Photographie de Dale Meyerdirk, Institut national de contrôle biologique.

Figure 8. Déformation des feuilles de papayer causée par la cochenille du papayer, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Photographie de Dale Meyerdirk, Institut national de contrôle biologique.

Gestion (Retour en haut)

Contrôle chimique. Un certain nombre de contrôles chimiques sont disponibles pour contrôler les cochenilles, bien qu'aucun ne soit actuellement enregistré spécifiquement pour le contrôle de la cochenille du papayer. Les ingrédients actifs des formulations pesticides homologuées comprennent l'acéphate, le carbaryl, le chlorpyrifos, le diazinon, le diméthoate, le malathion et les huiles minérales blanches. En règle générale, deux fois la dose normale est appliquée lors du traitement des cochenilles parce que les cochenilles sont protégées par d'épais sacs cireux et cotonneux et sont souvent cachées à l'intérieur des feuilles et des bourgeons endommagés. Ainsi, les contrôles chimiques ne sont que partiellement efficaces et nécessitent de multiples applications. De plus, les problèmes de résistance aux insecticides et les effets non ciblés sur les ennemis naturels font de la lutte chimique une option de lutte moins souhaitable pour lutter contre la cochenille du papayer.

Contrôle biologique. Les ennemis naturels de la cochenille du papayer comprennent le destructeur de cochenilles disponible dans le commerce (Cryptolaemus montrouzieri), les coccinelles, les chrysopes et les syrphes, tous des prédateurs généralistes ayant un impact potentiel sur les populations de cochenilles. En plus des prédateurs, plusieurs parasitoïdes peuvent s'attaquer à la cochenille du papayer.

En 1999, l'USDA Animal and Plant Health Inspection Service (APHIS) et l'USDA Agricultural Research Service (ARS) ont lancé un programme classique de lutte biologique contre la cochenille de la papaye. Quatre genres de guêpes endoparasitoïdes encyclopédiques spécifiques aux cochenilles ont été collectés au Mexique par des chercheurs de l'USDA et de l'ARS et des coopérateurs mexicains en tant qu'agents potentiels de lutte biologique : Acerophagus papaye (Noyes et Schauff), Anagyrus loecki (Noys et Menezes), Anagyrus californicus Compère, et Pseudaphycus sp. (USDA 1999, 2000 Meyerdirk et Kauffman 2001). Une cinquième espèce collectée a ensuite été élevée et identifiée comme Pseudleptomastix mexicana (Noyes et Schauff 2003).

Les quatre espèces ont été examinées dans des installations de quarantaine USDA/ARS à Newark, Delaware et des évaluations environnementales ont été réalisées (USDA-APHIS 1999, 2000, 2002). Les spécimens ont ensuite été expédiés à Porto Rico où ils ont été cultivés et élevés en masse pour une libération expérimentale à Porto Rico et en République dominicaine. Les premiers lâchers de ces quatre parasitoïdes ont été effectués en Floride en octobre 2000.

À ce jour, l'APHIS a constaté que la libération des quatre genres de guêpes parasitoïdes a entraîné une réduction de 99,7 % de la densité des populations de cochenilles sur des sites de recherche en République dominicaine et une réduction de 97 % sur des sites de recherche à Porto Rico, avec parasitisme entre 35,5% et 58,3% (Kauffman et al. 2001, Meyerdirk et Kauffman 2001). Les quatre espèces de parasitoïdes ont été observées attaquant les deuxième et troisième stades de P. marginatus. Cependant, Acérophage sp. est apparue comme l'espèce parasitoïde dominante à Porto Rico et en République dominicaine (Meyerdirk et Kauffman 2001). Le résultat des lâchers des quatre parasitoïdes en Floride n'a pas encore été déterminé en mars 2003.

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Becker H. 2000. Trois guêpes importées peuvent lutter contre la cochenille. Recherche agricole, mai 2000, p. 16-17.
  • Kauffman WC, Meyerdirk DE, Miller D, Schauff M, Hernandez HG, Villanueva Jimenez JA. 2001. Lutte biologique contre la cochenille de la papaye à Porto Rico et en République dominicaine. Présenté le 11 décembre 2001 à la réunion annuelle de l'ESA, San Diego, Californie.
  • Kauffman WC, Meyerdirk DE, Warkentin R. Contrôle biologique de la cochenille de la papaye dans les Caraïbes Safeguarding the U.S. Présenté du 2 au 4 août 2001 à la réunion de l'OIBC, Bozeman, MT.
  • Martinez M, Moraima S, Perez I. 2000. Deuxième envahisseur de cochenilles farineuses. CABI - Biocontrol News and Information 21 (2).
  • McKenzie H. 1967. Cochenilles farineuses de Californie avec taxonomie, biologie et contrôle des espèces nord-américaines (Homoptera : Coccoidae : Pseudococcidae). Presse de l'Université de Californie, Berkeley.
  • Meyerdirk DE, Kauffman WC. 2001. État d'avancement de l'élaboration d'un programme de lutte biologique pour Paracoccus marginatus Williams, cochenille de la papaye. Rapport interne USDA, APHIS, PPQ.
  • Miller DR, Miller GL. 2000. Informations taxonomiques sur Paracoccus marginatus. Réunion technique et atelier de lutte biologique contre la cochenille de la papaye, Paracoccus marginatus, dans les Caraïbes. Saint-Kitts, Antilles, 25-26 juillet 2000.
  • Miller DR, Miller GL. 2002. Redescription de Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink (Hemiptera : Coccoidea : Pseudococcidae), y compris les descriptions des stades immatures et du mâle adulte. Actes de la Société entomologique de Washington 104 : 1-23.
  • Miller DR, Williams DJ, Hamon AB. 1999. Notes sur un nouveau ravageur de la cochenille farineuse (Hemiptera : Coccoidea : Pseudococcidae) en Floride et dans les Caraïbes : la cochenille de la papaye, Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink. Insecta Mundi 13 : (3-4).
  • Nouveau groupe consultatif sur les ravageurs. 1998. NPAG Report File #98 (non publié). Département de l'Agriculture des États-Unis, Service d'inspection de la santé animale et végétale, Protection et quarantaine des végétaux, NPAG, Riverdale, MD. 11 p.
  • Noyes JS, Hayat M. 1994. Oriental Mealybug Parasitoids of the Anagyrini (Hymenoptera: Encyrtidae). CAB International, Royaume-Uni. 554 p.
  • Noyes JS, Schauff ME. 2003. Nouveau Encyrtidae (Hyménoptères) de Papaye Cochenille (Paracoccus marginatus Williams et Granara de Willink) (Hemiptera : Sternorrhyncha : Pseudococcidae). Actes de la Société entomologique de Washington 105 : 180-185.
  • Schauff ME, Gates M. 2002. Parasitoïdes de la cochenille du papayer (Paracoccus marginatus). EC Cariforum, Programme d'agriculture et de pêche des Caraïbes, "Atelier régional de formation sur la gestion de la cochenille de la papaye". San Juan, Porto Rico, 23-25 ​​octobre 2002.
  • Watson GW, Chandler LR. 1999. Identification des cochenilles importantes dans la région des Caraïbes. Commonwealth Science Council et CAB International, Londres. 40 p.
  • Williams DJ, Granara de Willink MC. 1992. Cochenilles farineuses d'Amérique centrale et d'Amérique du Sud. CAB International, Royaume-Uni, 644 p.
  • Département de l'agriculture des États-Unis, Service d'inspection de la santé animale et végétale. 1999. Lutte contre la cochenille du papayer, Paracoccus marginatus (Homoptera : Pseudococcidae). Évaluation environnementale, octobre 1999. Riverdale, MD.
  • Département de l'agriculture des États-Unis, Service d'inspection de la santé animale et végétale. 2000. Lutte contre la cochenille du papayer, Paracoccus marginatus (Homoptera : Pseudococcidae). Évaluation environnementale (supplément), juin 2000. Riverdale, MD.
  • Département de l'agriculture des États-Unis, Service d'inspection de la santé animale et végétale. 2002. Lutte contre la cochenille du papayer, Paracoccus marginatus (Homoptera : Pseudococcidae). Évaluation environnementale, juin 2002. Riverdale, MD.

Conception Web : Don Wasik, Jane Medley
Numéro de publication : EENY-302
Date de publication : août 2003. Dernière révision : septembre 2006. Révision : avril 2018.


Quel est le nom de ce bogue ? - La biologie

Parfois appelés manteaux rouges, chinches ou appartements en acajou (USDA 1976), punaises de lit, Cimex lectularius Linnaeus, sont des parasites hématophages des humains, des poulets, des chauves-souris et parfois des animaux domestiques (Usinger 1966). Les punaises de lit sont soupçonnées d'être porteuses de la lèpre, de la plaie orientale, de la fièvre Q et de la brucellose (Krueger 2000) mais n'ont jamais été impliquées dans la propagation de la maladie aux humains (Dolling 1991). Après le développement et l'utilisation d'insecticides modernes, tels que le DDT, les infestations de punaises de lit ont pratiquement disparu. Cependant, depuis 1995, les professionnels de la lutte antiparasitaire ont remarqué une augmentation des plaintes liées aux punaises de lit (Krueger 2000).

Figure 1. Punaise de lit adulte, Cimex lectularius Linné, se nourrissant. Photographie de Joseph Smith, Université de Floride.

Distribution (Retour en haut)

Les habitations humaines, les nids d'oiseaux et les grottes de chauves-souris sont les habitats les plus appropriés pour les punaises de lit car ils offrent de la chaleur, des zones pour se cacher et des hôtes sur lesquels se nourrir (Dolling 1991). Les punaises de lit ne sont pas réparties uniformément dans l'environnement, mais se concentrent dans les refuges (Usinger 1966). Dans les habitations humaines, les refuges comprennent les fissures et les crevasses dans les murs et les meubles, derrière le papier peint et les panneaux de bois, ou sous la moquette (Krueger 2000). Les punaises de lit ne sont généralement actives que la nuit, mais se nourrissent pendant la journée lorsqu'elles ont faim (Usinger 1966). Les punaises de lit peuvent être transportées sur les vêtements, dans les bagages, la literie et les meubles (USDA 1976). Les punaises de lit n'ont pas d'appendices qui leur permettent de s'accrocher aux cheveux, à la fourrure ou aux plumes, de sorte qu'elles sont rarement trouvées sur leurs hôtes (Dolling 1991).

Description (Retour en haut)

La punaise de lit adulte est un insecte ovoïde largement aplati aux ailes très réduites (Schuh et Slater 1995). Les ailes antérieures coriaces et réduites (hémélytres) sont plus larges que longues, avec un aspect quelque peu rectangulaire. Les côtés du pronotum sont couverts de poils courts et raides (Furman et Catts 1970). Avant de se nourrir, les punaises de lit sont généralement de couleur brune et mesurent entre 6 et 9,5 mm de longueur. Après s'être nourri, le corps est enflé et de couleur rouge (USDA 1976).

Figure 2. Vue dorsale d'une punaise de lit adulte, Cimex lectularius Linné. Photographie de David Almquist, Université de Floride.

Figure 3. Vue latérale d'une punaise de lit adulte, Cimex lectularius Linné. Photographie de Joseph Smith, Université de Floride.

Figure 4. Nymphe de la punaise de lit, Cimex lectularius Linné. Photographie de Joseph Smith, Université de Floride.

Les deux punaises de lit les plus importantes pour l'homme sont la punaise de lit commune, Cimex lectularius, et la punaise de lit tropicale, Cimex hémiptère. Ces deux espèces de punaises de lit peuvent être facilement distinguées en regardant le prothorax, le premier segment du thorax. Le prothorax de la punaise de lit commune est plus étendu latéralement et les bords extrêmes sont plus aplatis que celui de la punaise de lit tropicale (Ghauri 1973).

Cycle de vie (Retour en haut)

En raison de leurs espaces de vie confinés, la copulation entre les punaises de lit mâles et femelles est difficile. La femelle possède une ouverture copulatoire secondaire, l'organe de Ribaga ou sinus paragénital, sur le quatrième sternum abdominal où les spermatozoïdes du mâle sont injectés. Les spermatozoïdes migrent ensuite vers les ovaires en passant par l'hémocèle, ou cavité corporelle (Dolling 1991). La punaise de lit femelle pond environ 200 œufs au cours de sa vie à raison de un à 12 œufs par jour (Krueger 2000). Les œufs sont pondus sur des surfaces rugueuses et enduits d'un ciment transparent pour les faire adhérer au substrat (Usinger 1966). Dans les six à 17 jours, des nymphes de punaises de lit, presque dépourvues de couleur, émergent des œufs. Après cinq mues, qui durent environ dix semaines, les nymphes atteignent la maturité (USDA 1976).

Sondage et gestion (Retour en haut)

Les punaises de lit sont plus actives la nuit, de sorte que leurs infestations ne sont pas faciles à localiser (Snetsinger 1997). Cependant, lorsque les punaises de lit sont nombreuses, une odeur nauséabonde provenant des sécrétions huileuses peut facilement être détectée (USDA 1976). D'autres signes reconnaissables d'une infestation de punaises de lit comprennent des excréments laissés autour de leurs cachettes (Dolling 1991) et des taches brun rougeâtre sur les matelas et les meubles (Frishman 2000). Un bon assainissement est la première étape pour contrôler la propagation des punaises de lit. Cependant, des hôtels haut de gamme et des maisons privées ont récemment signalé des infestations, suggérant qu'un bon assainissement ne suffit pas pour arrêter une infestation de punaises de lit (Krueger 2000).

Si les punaises de lit se trouvent dans la literie ou les matelas, le contrôle devrait se concentrer sur des méthodes mécaniques, comme passer l'aspirateur, calfeutrer et enlever ou sceller le papier peint lâche, afin de minimiser l'utilisation de pesticides (Frishman 2000). L'efficacité de l'utilisation de nettoyeurs à vapeur ou d'eau chaude pour nettoyer les matelas est discutable. La chaleur est facilement absorbée par le matelas et ne nuit pas à la punaise de lit. Pour les infestations sévères, cependant, des pesticides peuvent être utilisés. Des précautions doivent être prises pour ne pas tremper les matelas et les tissus d'ameublement avec des pesticides. Laissez la literie et les meubles sécher complètement avant de les utiliser. Une étude montre que les brumisateurs en vente libre ne sont pas efficaces pour contrôler les punaises de lit (Jones et Bryant 2012).

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Poupée WR. 1991. Les Hémiptères. Oxford University Press, New York, New York.
  • EPA. 2018. Punaises de lit : sortez-les et éloignez-les. https://www.epa.gov/bedbugs. (12 mars 2021)
  • Frishman A. 2000. Principes de base et mesures de contrôle des punaises de lit. Lutte antiparasitaire 68 : 24.
  • Furman DP, Catts E. 1970. Manuel d'entomologie médicale, 3e éd. National Press Books, Palo Alto, Californie.
  • Ghauri MSK. 1973. Hémiptères (insectes), pp. 373-393. Dans K.G.V. Smith [éd], Insectes et autres arthropodes d'importance médicale. British Museum, Londres, Angleterre.
  • Jones Sc, Bryant JL. 2012. Inefficacité des brumisateurs à libération totale en vente libre contre la punaise de lit (Heteroptera : Cimicidae). Journal d'entomologie économique 105 : 936-942.
  • Koehler PG, Pereira RM, Pfiester M, Hertz J. (juillet 2011). Punaises de lit et conénose suceurs de sang. EDIS. (26 avril 2017)
  • Krueger L. 2000. Ne vous laissez pas piquer par la résurgence des punaises de lit. Lutte antiparasitaire 68 : 58-64.
  • Potier MF. (janvier 2010). Punaises. Fiches d'information sur l'entomologie de l'Université du Kentucky. (26 avril 2017)
  • Snetsinger R. 1997. Punaises de lit et autres punaises, pp. 393-425. Dans Mallis A, Hedges SA [éd.], Handbook of Pest Control, 8e éd. Franzak & Foster Co., Cleveland, Ohio.
  • Schuh R, le juge Slater. 1995. True Bugs of the World (Hemiptera : Heteroptera) Classification et histoire naturelle. Cornell University Press, Ithaque, New York.
  • [USDA] Département de l'Agriculture des États-Unis. 1976. Comment contrôler les punaises de lit. USDA. Washington DC.
  • Utilisateur RL. 1966. Monographie des Cimicidae (Hémiptères - Hétéroptères). Société entomologique d'Amérique, College Park, Maryland.

Une institution de l'égalité des chances
Rédactrice et coordonnatrice des créatures en vedette : Dr. Elena Rhodes, Université de Floride


Quel est le nom de ce bogue ? - La biologie

Les insectes aux gros yeux, Géocoris spp., sont de petits insectes (environ 1/6 de pouce de long) qui se produisent dans de nombreuses régions du monde. Ils sont généralement considérés comme bénéfiques parce qu'ils s'attaquent à de nombreux types d'insectes et d'acariens nuisibles du gazon, des cultures ornementales et agricoles. Les punaises obèses font partie des insectes qui font l'objet de recherches en Floride (et ailleurs) pour leur valeur en tant que prédateurs. Pour faciliter l'identification des punaises à gros yeux en Floride, une clé des adultes et des nymphes de dernier stade est fournie dans cette publication.

Figure 1. Punaise obèse adulte, Géocoris sp., se nourrissant d'une nymphe d'aleurode. Photographie de Jack Dykinga, USDA.

Distribution (Retour en haut)

Geocoris uliginosus (Disons) s'étend sur la plupart des États-Unis et le sud du Canada. En Floride, Geocoris uliginosus est connu au moins aussi loin au sud que Fort. Myers.

Figure 2. Adulte Geocoris uliginosus (Dites), un insecte obèse. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Pointes Geocoris (Say) est principalement une espèce austroripaire, commune dans toute la Floride, et allant du New Jersey à l'ouest jusqu'au sud de l'Indiana et du Colorado au sud et au sud-ouest jusqu'au Texas, en Arizona, en Californie et au Mexique. D'autres localités incluent le Guatemala, Panama et Hawaï.

Figure 3. Adulte Pointes Geocoris (Dites), un insecte obèse. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Geocoris bullatus (Say), la grande punaise obèse, est largement répandue aux États-Unis et au Canada, d'un océan à l'autre. Il existe de nombreux enregistrements en Floride de la frontière nord au sud de Key West.

Figure 4. Adulte Geocoris bullatus (Dites), le gros insecte obèse. Photographie de Julieta Brambila, USDA.

Description (Retour en haut)

Les punaises à gros yeux sont de petits lygaeids oblongs-ovales avec une tête plus large que longue et des yeux proéminents qui se courbent vers l'arrière et chevauchent l'avant du pronotum. Le stylet a une rainure longitudinale. Ces caractéristiques peuvent être observées sur les nymphes ainsi que sur les adultes et servent à séparer les punaises obèses des punaises similaires. Une caractéristique distinctive des punaises à gros yeux adultes est la commissure clavale très courte ou absente. Lygaeids tels que les punaises des céréales, Félicité spp. fausses punaises des céréales, Nysius spp. et les punaises de Pamera, Néopamera spp. sont parfois confondus avec les punaises obèses, mais ces genres ont une commissure clavale (Figure 5.) environ la moitié de la longueur du scutellum. De plus, la tête a une forme plus triangulaire chez ces lygaeids. Caplan (1968) a souligné la nécessité pour les spécialistes du gazon de faire la distinction entre les punaises obèses et les punaises des céréales. Une identification erronée pourrait entraîner une pulvérisation de punaises des céréales dirigée contre les géocorines, entraînant une perte inutile d'argent et d'insectes bénéfiques.

Chiffre. 5. Une comparaison de la commissure clavale sur une punaise obèse, Géocoris sp. (à gauche), et le bug d'apamera, Néopamera sp. (droit).

Figure 6. Punaises adultes (à gauche) et nymphe (à droite), Félicité sp. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Figure 7. Fausses punaises adultes (à gauche) et nymphe (à droite), Nysius raphanus Howard. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Figure 8. Punaise Pamera adulte, Néopamera sp. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Clé des espèces de Geocorinae adultes en Floride (Retour en haut)

La clé suivante des géocorines en Floride n'inclut pas deux espèces de Hypogéocore, qui ont été signalés en Floride, mais sont apparemment rares ou rares. Quelques variations mineures dans Geocoris bullatus (Dire) et Geocoris uliginosus (Dites) ont été formalisées en tant que sous-espèces, mais ne seront pas considérées ici.

1. Bec avec segment I (basal) plus long que la tête II (sauf dans Pointes Geocoris) ponctué (avec de petits noyaux) ou ruguleux (finement ridé) . . . . . Géocoris 2
1'. Bec avec segment I subégal ou plus court que II tête lisse, ponctué, luisant. . . . . Hypogéocore

2. Presque tout noir au-dessus à l'exception d'une bordure pâle le long de chaque côté du scutellum entièrement noir (2, dessus) . . . . . Geocoris uliginosus (Dire) 1832
2'. Principalement pâle au-dessus du scutellum avec une paire de zones ou de taches pâles (3, 4 dessus) . . . . . 3

3. Scutellum avec une paire de taches basolatérales calleuses, lisses (impunctées) proéminentes, les taches s'étendant parfois vers l'arrière (extension ponctuée). tête lisse, polie, pas du tout granuleuse marge postérieure interne du corium non marquée de fuscous ou au plus faiblement rainure du tylus s'étendant en arrière sur le vertex et traversée vers le milieu par un sillon transversal arqué (9, ci-dessous), longueur 3,5 à 4,2 mm (3, dessus) . . . . . Pointes Geocoris (Dites) 1832

Chiffre. 9. Aspect dorsal de la tête de Pointes Geocoris.

3'. Scutellum avec une paire de zones ponctuées, non calleuses, submédiales, jaune pâle la forme et l'étendue des zones pâles variables mais généralement oblong et partiellement angulé pronotum avec la paire de callosités impunctées presque rondes, tête jaune pâle granuleuse marge postérieure interne de corium marqué de deux "spots" fuscous, le postérieur un plus grand sillon du tylus ne s'étendant pas sur le vertex vertex dépourvu de sillon transversal longueur 3,0 à 3,5 mm (4, dessus) . . . . . Geocoris bullatus (Dites) 1832, le gros insecte obèse

Clé des nymphes du dernier stade de la Floride Espèces de Géocoris (Retour au sommet)

Pour s'assurer qu'une nymphe est une lygée, consultez la clé de Herring et Ashlock (1971) et/ou celle de DeCoursey (1971). Pour attribuer un genre à une nymphe lygaeid, consulter Sweet et Slater (1961).

1. Couleur de fond dorsale de la tête et du thorax brun foncé (10, au dessous de) . . . . . Geocoris uliginosus (Dire)
1'. Couleur de fond dorsale de la tête et du thorax pâles (taches sombres irrégulières souvent présentes) . . . . . 2

Figure 10. Nymphe de Geocoris uliginosus (Dites), un insecte obèse. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

2. Coussinets alaires mésothoraciques (ailes antérieures en développement) soit non marqués, soit avec un seul scutellum apical à taches brunes avec deux paires de taches brunes linéaires, parfois fusionnées en une grande paire, ces marques pronotum basolatéral généralement avec trois paires de taches brunes, de forme variable et degree of pigmentation, often inconspicuous antennal segments I through III each with prominent dorsoapical pale spot (Fig. 11, below) . . . . . Geocoris bullatus (Say), the large bigeyed bug

Figure 11. Nymph of the large bigeyed bug, Geocoris bullatus (Say). Photograph by Ronald Smith, Auburn University bugwood.org.

2'. Mesothoracic wing pads each with four or five brown marks (usually three basal streaks, one middle dot, and one prominent apical spot) scutellum with three to five pairs of dark brown marks (usually four pairs), the most prominent pair near middle pronotum with five to six pairs of conspicuous dark brown irregular spots antennal segments I to III each without dorsoapical pale spot (Fig. 12, below) . . . . . Geocoris punctipes (Say)

Figure 12. Nymph of Geocoris punctipes (Say), a bigeyed bug. Photographie de Lyle J. Buss, Université de Floride.

Life Cycle and Biology (Back to Top)

The literature on the food habits and life histories of Geocoris spp. is too extensive for more than a token review here. The most abundant bigeyed bug in Florida and the southeastern United States is Geocoris punctipes (Say). McGregor and McDonough (1917) reported the life history of Geocoris punctipes at Batesburg, South Carolina, finding the average development time from egg to adult was 30 days. York (1944) reported that adult Geocoris required either free moisture or plant moisture as well as insect prey. Sweet (1960) found that Geocoris adults can survive on sunflower seeds and water, without insect food. Dumas et al. (1962) found more Geocoris punctipes in the morning than at midday or evening, either by sweep net sampling or complete plant examination in Arkansas soybean fields. Stoner (1970) found that Geocoris punctipes apparently needed prey for proper development and fecundity.

Figure 13. Eggs of Geocoris bullatus (Say), the large bigeyed bug. Photograph by Ronald Smith, Auburn University www.insectimages.org.

Hôtes (Retour en haut)

Bell and Whitcomb (1964) reported that, in Arkansas, Geocoris punctipes et Geocoris uliginosus were among the most abundant and important predators of bollworm eggs, Helicoverpa (=Heliothis) zea (Boddie) on cotton from mid-June until September. Whitcomb and Bell (1964) reported that bigeyed bugs preyed upon aphids, plant bugs, eggs, and young larvae of the bollworm and cotton leafworm in Arkansas cotton fields. On the negative side, however, the prey occasionally were beneficial species (Orius spp.). Champlain and Sholdt (1967) reported on the life history of Geocoris punctipes dans le laboratoire. Lingren et al. (1968) reported Geocoris punctipes was a more effective predator than Geocoris uliginosus contre Helicoverpa (=Heliothis) spp. Nymphs consumed an average of 47 mites, and adults an average of 83 red spider mites on cotton per day. Orhanides et al. (1971) reported that Geocoris punctipes was an effective predator of the pink bollworm, Pectinophora gossypiella (Saunders), in southern California cotton fields. Tamaki and Weeks (1972) listed 46 references, itemized from the literature the prey list of Geocoris spp., and presented extensive research results from a five year project on Geocoris in the Yakima Valley of Washington, including data on Geocoris bullatus.

Références sélectionnées (Retour en haut)

  • Anonyme. (May 2000). Color photographs of adult Geocoris bullatus (Say) and Geocoris uliginosus (Say). Cedar Creek Natural History Area. (11 December 2014).
  • Bell KO, Whitcomb WH. 1964. Field studies on egg predators of the bollworm, Heliothis zea (Boddie). Florida Entomologist 47: 171-180.
  • Blatchley WS. 1926. Heteroptera or true bugs of Eastern North America, with especial reference to the faunas of Indiana and Florida. Nature Publishing Co., Indianapolis. 1116 p.
  • Caplan I. 1968. Some chinch bugs aren't. Weeds Trees and Turf 7: 31-32.
  • Champlain RA, Sholdt LL. 1967. Life history of Geocoris punctipes (Hemiptera: Lygaeidae) in the laboratory. Annals of the Entomological Society of America 60: 883-885.
  • DeCoursey RM. 1971. Keys to the families and subfamilies of the nymphs of North American Hemiptera-Heteroptera. Proceedings of the Entomological Society of Washington 73: 413-428.
  • Dumas BA, Boyer WP, Whitcomb WH. 1962. Effect of time of day on surveys of predaceous insects in field crops. Florida Entomologist 45: 121-128.
  • Herring JL, Ashlock PD. 1971. A key to the nymphs of the families of Hemiptera (Heteroptera) of America north of Mexico. Florida Entomologist 54: 207-212.
  • Lingren PD, Ridgay RL, Jones SL. 1968. Consumption by several common arthropod predators of eggs and larvae of two Heliothis species that attack cotton. Annals of the Entomological Society of America 61: 613-618.
  • McGregor EA, McDonough FL. 1917. The red spider on cotton. USDA Bulletin 416: 41-43.
  • Orhanides GM, Gonzalez D, Bartlett BR. 1971. Identification and evaluation of pink bollworm predators in southern California. Journal of Economic Entomology 64: 421-424.
  • Stoner A. 1970. Plant feeding by a predaceous insect, Geocoris punctipes. Journal of Economic Entomology 63: 1911-1915.
  • Sweet MH. 1960. The seed bugs: A contribution to the feeding habits of the Lygaeidae (Hemiptera: Heteroptera). Annals of the Entomological Society of America 53: 317-321.
  • Sweet MH, Slater JA. 1961. A generic key to the nymphs of North American Lygaeidae (Hemiptera: Heteroptera). Annals of the Entomological Society of America 54: 333-340.
  • Tamaki G, Weeks RE. 1972. Biology and ecology of two predators, Geocoris pallens Stäl and G. bullatus (Say). U.S. Department of Agriculture Technical Bulletin 1446. 46 pp.
  • Whitcomb WH, Bell K. 1964. Predaceous insects, spiders, and mites of Arkansas cotton fields. Arkansas Agricultural Experiment Station Bulletin 690. 84 pp.
  • York GT. 1944. Food studies of Geocoris spp., predators of the beet leafhopper. Journal of Economic Entomology 37: 25-29.

Author: F. W. Mead (retired), Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Division of Plant Industry.
Originally published as DPI Entomology Circular 121. Updated for this publication.
Photographs: Lyle J. Buss, University of Florida Julieta Brambila and Jack Dykinga, USDA Ronald Smith, Auburn University
Drawings: Division of Plant Industry
Conception Web : Don Wasik, Jane Medley
Publication Number: EENY-252
Publication Date: November 2001. Latest revision: December 2014. Reviewed: December 2017.


Structure of Cicada (With Diagram) | Zoologie

In this article we will discuss about the structure of Cicada with the help of a diagram.

Fig. 248 CICADA

1. It is commonly known as “cicada or seventeen year locust” and is a terrestrial insect which damages fruit trees.

2. The body is differentiated into head, thorax, and abdomen.

3. Head bears a pair of large compound eyes a pair of small antennae with bristles at the tip and piercing & sucking mouth parts.

4. Thorax bears three pairs of jointed legs and two pairs of wings which are membranous, cross veined and of smooth and uniform texture throughout.

5. Of the wings, the fore wings are large and hind wings small. They are folded over abdomen at rest.

6. Abdomen bears 8-9 segments, of which he last segment is smallest and narrow and the first segment bears two sets of vibrating plates.

7. They are noisy insects which produce loud sounds by rubbing their wings against vibrating plates and with each other.

8. Life cycle takes from 13 to 17 years in metamorphosis from nymph to adult and thus it is called seventeen year locust.

9. Adults feed on fruits and nymphs feed or plant sap from roots of the fruit trees.


Spittlebug


Photo par:
Dwight Kuhn/Bruce Coleman Inc.

Adult spittlebugs are inconspicuous, dull-colored, and about 6 mm (0.25 in) long. They readily jump or fly when disturbed. Females lay small eggs in rows, usually in hidden parts of the plant, such as the sheath between leaves and stems. Immature spittlebugs are readily recognized by the frothy white mass that surrounds them. The spittle is a mixture of watery waste air, which is blown through abdominal openings to make bubbles and a glandular secretion. The bugs secrete the frothy spittle to protect themselves from parasitic and predaceous insects. More than one nymph may be found in a single spittle mass. Spittlebugs have incomplete metamorphosis. Nymphs undergo about five molts and may be orange, yellow, or green. Most species have only one generation per year.

One common species, the meadow spittlebug, is found throughout the United States. It feeds primarily on herbaceous plants, but also occurs on conifers and young woody deciduous plants. Adults are robust and tan, black, or mottled brownish. Nymphs are yellow to green beneath their foaming mass of spittle. The western pine spittlebug is one of several species that are common on conifers and the plants that typically grow under them in the Western United States. Nymphs are dark greenish, brown, or black, sometimes with lighter spots or a pink abdomen. Adults are brownish orange to dark brown and may have an indistinct diagonal white line across the back.

Scientific classification: Spittlebugs are in the insect family Aphrophoridae, order Homoptera. The meadow spittlebug is classified as Philaenus spumarius the western pine spittlebug is classified as Aphrophora permutata.


Insecte Assassin

La punaise assassin adulte est relativement grande, généralement de 11 à 37 mm (0,5 à 1,5 po) de longueur. Comme pour la plupart des vrais insectes, il a des ailes antérieures épaissies avec des pointes membraneuses pour manipuler les proies. Au repos, le bec allongé et segmenté peut être replié sous son corps. Ses ailes repliées se chevauchent, donnant au dos une forme caractéristique. Les adultes sont généralement noirs, rougeâtres ou bruns, avec de longues pattes minces, une tête étroite et des yeux ronds et globuleux. Certaines espèces ont des barbes acérées sur leurs pattes antérieures pour empêcher les proies de s'échapper.

Toutes les espèces de punaises assassines sont prédatrices, se nourrissant principalement de chenilles et d'autres insectes. L'insecte assassin utilise son bec en forme d'aiguille pour empaler ses proies. Il injecte ensuite un venin qui à la fois paralyse et digère partiellement la proie. Le contenu du corps de la victime se liquéfie et est aspiré par les pièces buccales en forme de paille de l'insecte assassin. Quelques espèces, comme le conénose suceur de sang occidental, mordent couramment les humains et d'autres mammifères. Ces espèces hématophages sont parfois appelées punaises embrassantes car elles sont attirées par la chair tendre exposée, comme le visage et les lèvres des humains endormis. Même les espèces qui ne se nourrissent que d'insectes peuvent infliger des morsures douloureuses aux humains avec des inflammations qui peuvent persister plusieurs jours.

Les œufs sont pondus ouvertement en grappes sur les plantes. Les œufs de certaines espèces ont des épines ou des surfaces richement sculptées. Ils éclosent sous une forme larvaire partiellement développée appelée nymphe. Les nymphes ont une forme similaire aux adultes de la même espèce, sauf qu'elles sont aptères, plus petites et souvent de couleur différente.

L'une des espèces les plus courantes est la punaise assassin de la cicadelle. Les adultes mesurent 1,5 cm (0,6 po) de long et sont de couleur brune et rougeâtre. Un sous-groupe distinctif de punaises assassins sont les punaises à pattes filetées, qui ont un thorax allongé (segment médian) et un corps et des pattes minces. Ils sont souvent brunâtres et ressemblent à des insectes phasmes.

Classification scientifique : Les insectes assassins sont membres de la famille des Reduviidae dans le véritable ordre des insectes hémiptères. Les punaises à pattes filetées sont des membres de la sous-famille des Emesinae. La punaise assassin de la cicadelle est classée comme Zelus renardii et la conénose suceuse de sang occidentale comme Triatoma protracta.


Scientific name for mosquito

Each mosquito species has a Latin scientific name, such as Anopheles quadrimaculatus. Anopheles is the "generic" name of a group of closely related mosquitoes and quadrimaculatus is the "species" name that characterizes a group of individuals that are similar in structure and physiology and capable of interbreeding.

These names are used in a descriptive manner so that the name tells something about each particular mosquito, for example, Anopheles - Greek meaning hurtful or prejudicial and quadrimaculatus - Latin meaning four spots (4 dark spots on the wings). Some species have what are called "common names" as well as scientific names, such as Ochlerotatus taeniorhynchus, the "black salt marsh mosquito."

The Name "Mosquito" scientific?

The Spanish called the mosquitoes, "musketas," and the native Hispanic Americans called them "zancudos." "Mosquito" is a Spanish or Portuguese word meaning "little fly" while "zancudos," a Spanish word, means "long-legged." The use of the word "mosquito" is apparently of North American origin and dates back to about 1583. In Europe, mosquitoes were called "gnats" by the English, "Les moucherons" or "Les cousins" by French writers, and the


The Biology of the Goat

The heads of biting lice are large. They have mouth parts that are adapted to chewing structures that are part of their diet such as hair, feathers, skin debris, scabs, wool wax, and even their own eggs. They do not actually bite but a few species are known to be able to suck tissue fluids from their hosts.

Species of biting lice that live on birds possess colonies of bacteria in the cells of their digestive system which help them digest the keratin of feathers. Biting lice, like the species that occur on goats and sheep are thought to damage hair by eating into the shaft almost like felling a tree.

These lice prefer to live at the base of the tail, between the legs, on the shoulders, head, neck and along the back, but can appear anywhere on the goat in a heavy infestation.

Sucking Lice

When the louse pierces the skin, saliva is injected into the wound which prevents the blood from clotting. The reaction to the saliva causes severe irritation to the goat such as biting, scratching, restlessness, loss of sleep and interruption of feeding. A large infestation can also cause anemia from loss of blood.

These lice feed almost constantly resulting in oozing blood which clots on the surface of the skin. This can cause a secondary bacterial skin infection as well as attract flies. These lice are usually found on the legs.

Cycle de la vie

The female louse attaches her eggs (called nits) to the hair shaft with a strong glue-like substance. The first nymph developes inside the egg and looks very much like an adult louse except that it is smaller and is not sexually developed. The first nymph hatches out of the egg in 1 to 2 weeks. A week or so later the first nymph will molt its skin becoming a second nymph which becomes a third nymph which will then metamorphose into the adult stage. The entire cycle from egg to adult is completed in about 4 to 6 weeks depending on the species.

Lice at any stage will die in a short time if they fall off of the host. Eggs cannot hatch at all if they fall off the host. Skin temperature is a critical factor in hatching of eggs. Higher temperatures prevent eggs from developing. This may account for the fact that populations of lice are higher in the winter than in the summer months or why some lice prefer the cooler temperatures of the legs in the summer and the warmer temperature of the host's body in the winter. One species of biting lice that infect horses are parthenogenic -- females can lay fertile eggs without mating.


Batelier d'eau

Water boatmen have a grayish, elongated, oval body, 3 to 12 mm (0.13 to 0.5 in) long. They have a conical beak and a broad head with large eyes. Adults have short, flattened front legs long, slender middle legs and oarlike hind legs fringed with fine hairs that aid in swimming. Eggs are attached to aquatic vegetation as they are laid. Nymphs develop through five growth stages, or instars, and have incomplete metamorphosis.

Like all aquatic bugs, water boatmen lack gills they breathe air when at the surface of the water. They frequently carry an air bubble on their body surface or under their wings, and draw oxygen from this bubble while they are underwater. Water boatmen can swim rapidly, but they spend long periods clinging to vegetation. Males stridulate, or chirp, to attract mates by rubbing their forelegs against their head.

Water boatmen occur most commonly in ponds and along the edges of lakes, although a few species inhabit the brackish waters of estuaries. Most water boatmen eat algae and minute aquatic organisms. Some are predaceous and feed on mosquito larvae and other small aquatic animals in this way, they help to control aquatic pests. In turn, they are important prey for many larger aquatic animals. Their broad beak or mouth allows them to ingest solid food particles as well as liquids other true bugs are able to ingest only liquids. Unlike many other aquatic bugs, water boatman will not bite people.

Water boatmen are sometimes confused with backswimmers, which are generally larger bugs that swim upside down and deliver a painful bite. Water-boatmen eggs are used as food in Mexico and some other parts of the world. Eggs are collected from aquatic plants, dried, and ground into flour.

Scientific classification: Water boatmen make up the true bug family Corixidae, suborder Heteroptera, order Hemiptera.


Voir la vidéo: j ai changé le nom de ma chaine (Août 2022).